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核酸電泳實(shí)驗(yàn)問(wèn)題有哪些?如何解決?

 更新時(shí)間:2023-09-27 點(diǎn)擊量:1379

你知道核酸電泳實(shí)驗(yàn)問(wèn)題有哪些嗎?該如何解決呢?讓我們一起來(lái)看看吧!

一、無(wú)條帶或幾乎看不到條帶

原因:

1.上樣染料掩蓋目標(biāo)條帶;

2.凝膠超限運(yùn)行;

3.電極反接;

4.染色敏感度低;

5.光源錯(cuò)誤。

解決方法:

1.檢查電泳中使用的加載染料的表觀遷移大小。因?yàn)槿玖峡赡軙?huì)掩蓋和隱藏目標(biāo)條帶,特別是在樣品量低的情況下。

2.監(jiān)測(cè)加載染料的運(yùn)行時(shí)間和遷移,以避免將較小的樣品分子從凝膠上運(yùn)走。

3.確保將電極正確連接至電源。設(shè)置水平凝膠時(shí),凝膠孔應(yīng)與負(fù)極位于同一側(cè)。

4.檢查制造商提供的用于檢測(cè)核酸的熒光染色劑的靈敏度。

增加染色劑用量和/或延長(zhǎng)染色時(shí)間,使單鏈核酸顯色?;蛘?,考慮對(duì)單鏈分子 具有 更高親和力的du特染色,以提高檢測(cè)的特異性和靈敏度。

對(duì)于較厚或高百分比凝膠,應(yīng)延長(zhǎng)染色時(shí)間,以確保熒光染色劑充分滲透。

5.如果使用熒光染料進(jìn)行染色,請(qǐng)檢查其激發(fā)波長(zhǎng)以確保使用的光源對(duì)刺激染料進(jìn)行可視化來(lái)說(shuō)是最佳的。

二、條帶拖尾或擴(kuò)散(模糊)

原因:

1.上樣孔形成不佳;

2.樣品超載;

3.樣品溶于高鹽緩沖液;

4.樣品含有大量蛋白質(zhì)。

解決方法:

1.灌注凝膠前,應(yīng)適當(dāng)清潔凝膠梳。

不可將凝膠槽填充過(guò)滿,否則會(huì)導(dǎo)致上樣孔連接。

移除凝膠梳之前,應(yīng)預(yù)留足夠的上樣孔形成時(shí)間。

2. 在凝膠電泳中,不可使用過(guò)量樣品;每1毫米的凝膠孔寬度通常推薦0.1–0.2 μg的樣品用量。而拖尾、彎曲或U形條帶以及融合條帶均是過(guò)載凝膠的常見(jiàn)表現(xiàn)。

3. 檢查加載緩沖液的鹽濃度是否與選定的凝膠兼容。如有需要,可稀釋上樣緩沖液。

4. 存在于樣品中的蛋白質(zhì)可能會(huì)干擾凝膠中的樣品遷移率。通過(guò)純化樣品來(lái)去除蛋白質(zhì),或者通過(guò)在裝有SDS的加載染料中制備樣品并在加載之前加熱來(lái)分離/變性蛋白質(zhì)。

三、條帶分離不佳

原因:

1. 未選擇最佳的凝膠類型

2. 凝膠類型錯(cuò)誤

3. 電壓過(guò)低或過(guò)高

4. 電泳時(shí)間過(guò)短或過(guò)長(zhǎng)

解決方法:

1. 選擇更適合分離樣品的凝膠類型。推薦使用聚丙烯酰胺凝膠來(lái)解析核苷酸<1,000 bp。

2. 對(duì)于單鏈核酸(例如RNA)的電泳,制備用于有效分離的變性凝膠。對(duì)于雙鏈DNA的電泳,應(yīng)避免使用變性凝膠,以保護(hù)雙鏈結(jié)構(gòu)。

3. 施加電壓為建議的核酸的大小范圍和使用的運(yùn)行緩沖液。電壓過(guò)低或過(guò)高,都無(wú)法實(shí)現(xiàn)最佳的核酸分離。

4. 足夠長(zhǎng)的運(yùn)行凝膠以確保充分分離條帶。但電泳時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),否則會(huì)導(dǎo)致過(guò)度加熱、樣品變性和條帶擴(kuò)散。

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